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Stbl3电转感受态细胞

Stbl3电转感受态细胞

简要描述:Stbl3电转感受态细胞
Stbl3菌株来源于 HB101 E. coli strain,是慢病毒载体系统推荐使用的菌株。基因组含有重组酶recA13突变,可有效抑制长片段末端重复区的重组,降低错误重组的概率;但不含核酸酶endA1突变,体内核酸酶含量较高,提取质粒时务必使用质粒提取试剂盒中去蛋白液尽量去除核酸酶对质粒的污染。此菌株具有链霉素抗性,不存在lacIqZΔM15,不可用于蓝、白斑筛选。

更新时间:2022-01-20

厂商性质:生产厂家

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详情介绍
品牌其他品牌货号BFNC86039
规格5x50ul/20x50ul供货周期现货
主要用途仅用于科研应用领域医疗卫生,生物产业

Stbl3电转感受态细胞



产品规格CAT#: BFNC86039-01(5×50ul)/BFNC86039-02(20×50ul)


Stbl3 Electroporation-Competent Cell                   50μl/支

pUC19 (control vector,10pg/μl):                                10μl

保存条件(保质期):                                         -80℃(6个月)



基因型

F- mcrB mrr hsdS20(rB-, mB-) recA13 supE44 ara-14 galK2 lacY1 proA2 rpsL20 (StrR) xyl-5 λ-leu mtl-1 endA1+





产品说明

Stbl3菌株来源于 HB101 E. coli strain,是慢病毒载体系统推荐使用的菌株。基因组含有重组酶recA13突变,可有效抑制长片段末端重复区的重组,降低错误重组的概率;但不含核酸酶endA1突变,体内核酸酶含量较高,提取质粒时务必使用质粒提取试剂盒中去蛋白液尽量去除核酸酶对质粒的污染。此菌株具有链霉素抗性,不存在lacIqZΔM15,不可用于蓝、白斑筛选。

青旗生物生产的Stbl3电转感受态细胞经特殊工艺制作,pUC19质粒检测转化效率可达1×109 cfu/μg DNA。





操作方法

1. 0.1 cm 电击杯和杯盖从储存液中拿出倒置于干净的吸水纸上5分钟,待其沥干水分,正置5分钟,待乙醇挥发干净立即插入冰中,压实冰面,电极杯顶离冰面0.5 cm以方便盖上杯盖,冰中静置5分钟充分降温。

2. 取-80℃保存的Stbl3电击感受态细胞插入冰中5 分钟,待其融化,加入目的DNA (质粒或连接产物)并用手bo打EP管底轻轻混匀,避免产生气泡,立即插入冰中。

     A. 测定转化效率使用1 μl 10 pg/μl的对照质粒 pUC19;

     B. 对于连接产物,大部分公司的T4连接酶反应体系或50度反应重组体系可与Stbl3电击感受态混合后电击转化,无需             进行DNA纯化,但DNA浓度不能过高,DNA浓度不超过100 ng/μl,体积不超过5 μl/50 μl感受态。

     C. 对盐浓度较高的DNA溶液或反应体系请用乙醇沉淀DNA后加入适量TE缓冲液 (10 mM Tris HCl, pH7.5; 1 mM                   EDTA)重悬,然后与Stbl3电击感受态混合进行电击转化。

3. 用200 μl枪头(用刀切除0.5cm枪尖)将感受态-DNA混合物快速移到电击杯中,避免产生气泡,盖上杯盖。

4. 启动电转仪,设置参数:C=25 μF,PC=200 Ω,V=1.8 kV (此为BioRad 电转仪推荐参数,也可按所用电转仪推荐的参数操作),将电击杯快速放入电转槽中,电击完成快速插入冰中。

5. 2分钟后从冰中取出电击杯,放室温,加入700 μl不含抗生素的无菌S.O.C. 培养基(室温),用1ml 枪吹吸电击杯底部数次混匀后,转移到50 ml离心管(BD Falcon 50 ml锥形离心管等),向离心管中补加S.O.C. 培养基至10 ml。37℃,225 rpm复苏60分钟。

6. 5000 rpm离心一分钟收菌,重悬后取100-200 μl涂布到含相应抗生素的S.O.C平板上(因菌量较大,若全部涂板请选用直径15cm培养皿2-5个)。将平板倒置放于37℃培养箱过夜培养13-17小时。




Stbl3电转感受态细胞




S.O.C 培养基配方

2% Tryptone

0.5% Yeast Extract

10 mM NaCl

2.5 mM KCl

10 mM MgCl2

10 mM MgSO4

20 mM glucose

PH-7.0




S.O.C. Medium is suitable for use in the final step of cell transformation to obtain maximal transformation efficiency of E. coli (Hanahan, 1983).



注意事项


1. 加入DNA时体积不应大于感受态体积的1/10。

2. 电转感受态细胞加入电击杯应避免产生气泡,气泡会增加弧光放电风险。

3. 当DNA不纯或存在盐,乙醇,蛋白及缓冲液等污染时,转化效率急剧下降。

4. 电击杯里的离子可增加溶液的电导,增大在含有细胞和DNA的溶液中产生电流和弧光放电的风险。

5. 若转化大质粒或想获得较高转化效率,推荐使用高纯质粒提取试剂盒提取质粒。质粒增大一倍,转化效率下降一个数量级。

6. 对于连接产物转化,部分公司的连接体系或重组体系(例如:Thermo,NEB公司的T4 连接酶系统,NEB,天根的50度反应重组系统)可以直接Stbl3电击感受态混合后电击转化,无需纯化,但DNA浓度不能过高,尽量不超过100 ng/μl。过高浓度连接产物或过大体积连接产物会降低转化效率,增加弧光放电的风险。

7. 混入质粒时应轻柔操作,吸取感受态细胞时避免用力过猛,以免剪切力过大损伤细胞膜,降低转化效率。转化高浓度的质粒或连接产物可相应减少终用于涂板的菌量。

8. 电击感受态细胞尽量保存在-80℃以下,高于-80℃超期储存会导致转化效率会下降。





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